SCA® Movilidad y concentración análisis de esperma para animales

SCA® Movilidad y concentración es un modulo de análisis de la motilidad y concentración en una muestra de semen animal.

Este módulo de análisis también está
disponible para Humano y Toxicología.

Apropiado para animales domésticos, la mayoría de vertebrados (mamíferos, aves, reptiles, amfibios, peces) e invertebrados (p.ej. mejillones, ostras, erizos de mar).

Más información:

Petición de
información

Petición de
demostración

Disponible para las siguientes especies animales

Últimas novedades de SCA® Movilidad y concentración

Histograma velocidades

Nuevo histograma de velocidades de los espermatozoides (VCL).

Parámetro drift

Opción que permite eliminar el movimiento de deriva en la muestra.

Selección de criterio

Visualización de las trayectorias segun varios criterios.

Exportar vídeos

Exporta videos .avi incluyendo o no las trayectorias del análisis.

Características principales de SCA® Movilidad y concentración

SCA® Movilidad y concentración detecta los espermatozoides de forma automática.

Las muestras se analizan en contraste de fases (contraste de fases positivo en humano y negativo en animal.

Se recomienda análisis en fluorescencia en el caso de muestras con diluyentes que tengan yema de huevo o leche.

El contaje de espermatozoides y el análisis de la motilidad se realizan simultáneamente.

Los espermatozoides móviles se analizan siguiendo la trayectoria del esperma y la velocidad. Los resultados, que comprenden todos los parámetros cinemáticos del CASA, se presentan en cuestión de segundos.

SCA® es una poderosa herramienta, ya que el sistema CASA es el único método objetivo que permite analizar el total de espermatozoides progresivos y móviles en una muestra, dando una idea del potencial fértil de los mismos.

Información adicional

SCA® Movilidad y concentración in las distintas ediciones disponibles

Opciones de configuración

	Edición Veterinaria	Edición Toxicología	Edición Investigación
Creación de nuevas configuraciones de análisis
Modificación de la velocidad de adquisición de imágenes fps
Modificación de la óptica, microscopio escalas y opciones de captura de imagen.
Elección de cámara de análisis (Leja®, Makler®, etc)
Platina motorizada prior optiscan III
Área de la partícula (cabeza del espermatozoide)
VCL o VAP, STR, LIN, VAP, Conectividad, grupo, restricciones de análisis
Especies: Humano	–	–
Especies: Todas (humano, todos los animales, incluidos rata y ratón)	–	–
Especies: Todos los animales con cabeza oval		–
Especies: rata y ratón	–

Cámara digital

	Edición Veterinaria	Edición Toxicología	Edición Investigación
Cámara digital Basler específica con resolución 780×580 y hasta 75 fps (velocidad de captura de imágenes)
Cámara digital Basler específica con resolución 1280×1024 y hasta 200 fps (velocidad de captura de imágenes)

Resultados

	Edición Veterinaria	Edición Toxicología	Edición Investigación
Total de espermatozoides analizados
Porcentaje de los espermatozoides analizados que son Estáticos, No progresivos y progresivos.
Concentración en M/ml y en el volumen de la muestra
Concentración en M/ml y en el volumen de la muestra de estáticos, no-progresivos y progresivos
Total y porcentajes de espermatozoides analizados rápidos, medios, lentos y estáticos
Concentración en M/ml y en el volumen de la muestra de rápidos, medios, lentos y estáticos
Total y porcentaje de Rápidos progresivos, Medios progresivos, No progresivos y Estáticos
Concentración en M/ml y en el volumen de la muestra de Rápidos progresivos, Medios progresivos, No progresivos y Estáticos
Área de la cabeza, Media en µm al cuadrado
Área de la cabeza en estáticos, lentos, medios y rápidos de los espermatozoides analizados
Media de las células redondeas en M/ml
Concentración total de las células redondas en M/ml
Total y porcentaje de las trayectorias circulares
Media de VCL, VSL, VAP, LIN, STR, WOB en los espermatozoides analizados
Media de VCL, VSL, VAP, LIN, STR, WOB en los espermatozoides analizados lentos, medios y rápidos
Total y porcentaje de los espermatozoides analizados hiperactivos
Concentración de los espermatozoides hiperactivos en M/ml y en M/muestra
Valores medios de ALH y BCF en los espermatozoides analizados
ALH y BCF en espermatozoides lentos y rápidos progresivos
Imágenes de captura y gráficos de distribución
Videos capturados

Módulos compatibles

	Edición Veterinaria	Edición Toxicología	Edición Investigación
SCA® dataShare
SCA® Stage Controller
SCA® Capture
SCA® Viewer
SCA® Editor
SCA® Gotas		–

Especificaciones técnicas

Especificaciones

La movilidad y concentración son analizadas en contraste de fases (una técnica de microscopía óptica que convierte los cambios de fase en la luz que pasa a través de una muestra transparente en cambios de brillo en la imagen. Estos cambios de fase, aunque invisibles, se hacen visibles cuando se muestran como variaciones de brillo permitiendo una clara visualización de la muestra de semen).

O fluorescencia (La muestra se ilumina con luz de una determinada longitud de onda que es absorbida por los fluorocromos, haciendo que emita luz de longitudes de onda más largas (por ejemplo, de un color diferente al de la luz absorbida).

Las imágenes se capturan con la cámara digital de alta velocidad Basler ( 25 , 50, 75 o hasta 200 fps)

Detección automática de campos no homogéneos, lo que permite un análisis consistente

Hay una función de clasificación, grupo , que permite crear grupos de población de esperma, muy útil en investigación.

Parámetros modificables: Área de partículas para la detección de espermatozoides, clasificación de la velocidad, VAP, velocidad de captura (frame rate), conectividad, circularidad, restricción de parámetros, como por ejemplo: elongación (para mejorar la detección de células).

Otros parámetros modificables: color de la máscara de la trayectoria.

Permite capturar hasta 30 campos de la muestra

Tiempo de captura es de 1 segundo por campo

Compatible con varias cámaras de análisis: Consumibles como la cámara de recuento Leja® , o Makler®.

Parámetros analizados

Contaje

Parámetros cinemáticos:

VCL, velocidad curvilínea (µm/s). Velocidad promedio de una cabeza de espermatozoide a lo largo de su trayectoria curvilínea real, bidimensional, tal y como se percibe en el microscopio. Una medida de vigor celular.

VSL, velocidad rectilínea (µm/s). Velocidad promedio de una cabeza de espermatozoide a lo largo de la línea recta entre su primera y última posición detectada.

VAP, velocidad promedio (µm/s). Velocidad promedio de una cabeza de espermatozoide a lo largo de su trayectoria media. Esta ruta se calcula suavizando la trayectoria curvilínea de acuerdo con algoritmos del módulo SCA de Motilidad.

ALH, amplitud del movimiento lateral de la cabeza (µm). Magnitud del desplazamiento lateral de una cabeza de esperma sobre su trayectoria media. Se puede expresar como un máximo o un promedio del desplazamiento.

LIN, linearidad. La linearidad de la trayectoria curvilínea, VSL/VCL.

WOB, oscilación. Es una medida de oscilación de la trayectoria recorrida respecto a la promedio, VAP/VCL

STR, rectitud. Linealidad de la trayectoria promedio, VAP/VCL

BCF, frecuencia de cruce (Hz) La velocidad media a la que la trayectoria curvilínea cruza la trayectoria promedio.

Resultados

Concentración de la muestra (eyaculado o dosis) en M/ml.

Total de espermatozoides analizados, su porcentaje en la muestra, concentración en M/ml y en el volumen de de la misma de los espermatozoides clasificados según:

Velocidad: Rápidos, Medios, Lentos y Estáticos

Clasificación: Rápidos progresivo, Medios progresivos, No progresivos y Estáticos

Clasificación: Progresivos, Móviles y Estáticos

Hiperactivos

Media de los parámetros cinemáticos presentes en la muestra

Total del Área de la cabeza / tipo de velocidad

Total de células redondas / tipo de velocidad

Total y porcentaje de trayectorias circulares

ALH y BCF en espermatozoides medios y Rápidos Progresivos